前言

本標準按 GB/T 1.1-2009給出的規(guī)則起草。本標準由中國獸醫(yī)協(xié)會提出并歸口。本標準起草單位:中國動物疫病預防控制中心、中國獸醫(yī)藥品監(jiān)察所、中國農業(yè)科學院哈爾濱獸醫(yī)研究所、中國農業(yè)科學院蘭州獸醫(yī)研究所、北京海關。

非洲豬瘟病毒實時熒光PCR檢測方法

1、范圍

本標準規(guī)定了非洲豬瘟病毒實時熒光PCR檢測方法的試劑、儀器和耗材、操作步驟、結果判定、實驗室生物安全等技術要求。

本標準適用于豬脾臟、淋巴結、血液等組織和血粉中非洲豬瘟病毒核酸的檢測。

2、規(guī)范性引用文件

下列文件對于本文件的應用是*的。凡是注日期的引用文件，僅注日期的版本適用于本文件。凡是不注日期的引用文件，其版本(包括所有的修改單)適用于本文件。

GB 19489 實驗室 生物安全通用要求

NY/T 541 獸醫(yī)診斷樣品采集、保存與運輸技術規(guī)范

3、試劑

3.1DNA提取試劑

DNA提取試劑的配制見附錄A，或選取商品化的病毒DNA提取試劑盒并參照說明書進行DNA提取。

3.2 2 × PCR緩沖液

2× PCR緩沖液的配制見附錄A。

3.3引物探針

3.3.1采用針對非洲豬瘟病毒VP72基因(核苷酸序列見附錄B)的引物及探針:

上游引物ASF-CADC-rPCRF:5'-1528-ATAGAGATACAGCTCTTCCAG-1548-3'

下游引物ASF-CADC-rPCRR:5'-1660-GTATGTAAGAGCTGCAGAAC-1679-3'

熒光探針ASF-CADC-Probe:5'-1638-FAM-TATCGATAAGATTGAT-MGB-1653-3'

3.3.2可以使用世界動物衛(wèi)生組織(OIE)在陸生動物診斷技術和疫苗手冊(Manual of Diagnostic Tests andVaccines for Terrestrial Animals)第2.8.1章African Swine Fever中提供的引物和探針，并按照手冊中規(guī)定的檢測程序和判定標準操作:

上游引物ASF-OIE-rPCRF:5'-1627-CTGCTCATGGTATCAATCTTATCGA-1651-3'

下游引物ASF-OIE-rPCRR:

5'-1857-GATACCACAAGATCRGCCGT-1876-3'

熒光探針ASF-OIE-Probe:

5'-1761-FAM-CCACGGGAGGAATACCAACCCAGTG-TAMRA-1785-3'

3.3.3使用國家農業(yè)行政主管部門批準的其他引物、探針，應對檢測程序和判定標準作相應調整。

3.4 陰性及陽性對照

陰性及陽性對照的制備方法見附錄C。

3.5 其他試劑

消毒液、5U/μLTaq DNA聚合酶、無菌無核酸酶水、0.01mol/L PBS(pH7.2)。

消毒液配制見附錄A， 0.01mol/L PBS配制見附錄A。

4、儀器和耗材

分析天平(感量0.1 mg)、高速臺式冷凍離心機(高離心速度不低于12 000 r/min)、冰盒、實時熒光PCR儀及配套反應管(板)、組織研磨器、-20℃冰箱、可調移液器(2 μL，20 μL，200μL，1 000 μL)、1.5mL離心管(無核酸酶)。

5、操作步驟

5.1 樣品采集及運輸

樣品采集及運輸按照NY/T 541的規(guī)定執(zhí)行，采集豬的脾臟、淋巴結、血液等組織材料或血粉用于檢測，樣品應在冷藏條件下盡快運輸至實驗室，避免反復凍融。采樣時應穿戴個人生物安全防護裝備，實施現(xiàn)場消毒和廢棄物處理。

5.2 樣品處理

檢測前樣品應在二級生物安全柜中處理。取0.1g~0.2g組織或血粉，經(jīng)研磨破碎后加1mL的0.01mol/L PBS(pH7.2)制成勻漿，經(jīng)10 000 r/min離心取上清;全血、血清樣品直接取1mL，置于1.5 mL離心管內蓋緊管帽。將上述處理的樣品置于60℃條件下滅活30min。

5.3 樣品保存

采集或處理好的樣品在2℃~8℃條件下保存應不超過24 h;如需長期保存，應放置-70℃冰箱，但應避免反復凍融(凍融不超過3次)。

5.4 病毒DNA提取

5.4.1 DNA提取應在樣本制備區(qū)內采用以下方法進行，若使用其他等效的病毒DNA提取試劑，則按照試劑說明書操作。

5.4.2 待檢樣品、陽性對照和陰性對照的份數(shù)總和用n表示，取n個滅菌1.5 mL離心管，逐管編號。

5.4.3 每管加入200μL DNA提取液1，然后分別加入待測樣品、陰性對照和陽性對照各200μL，1份樣品換用1個吸頭，混勻器上震蕩混勻5s。于4℃~25℃條件下，13 000 r/min離心10 min。DNA提取液1見附錄A。

5.4.4 盡可能吸取上清、棄去，吸頭不要碰到沉淀，再加入10 μL DNA提取液2，混勻器上震蕩混勻5 s。于4℃~25℃條件下，2 000 r/min離心10s。DNA提取液2見附錄A。

5.4.5 100℃干浴或沸水浴10 min。

5.4.6 加入90μL無DNA酶的滅菌去離子水，13 000 r/min離心10 min，上清即為提取的DNA，-20℃保存?zhèn)溆谩oDNA酶的滅菌去離子水見附錄A。

5.5 實時熒光PCR操作

5.5.1 在反應混合物配制區(qū)、樣品制備區(qū)和檢測區(qū)分別進行5.5.2~5.5.4。

5.5.2 每個檢測反應體系需使用20μL實時熒光PCR反應液。根據(jù)5.4.2中設定的n值，按附錄D配制反應液，充分混勻后分裝，每個PCR反應管20μL。轉移PCR反應管至樣品制備區(qū)。

5.5.3 在上述5.5.2的反應管中分別加入5.4中提取的DNA溶液5μL，使每管總體積達到25 μL，記錄反應管對應的樣品編號。蓋緊管蓋后，瞬時離心。

5.5.4 將5.5.3加樣后的反應管放入實時熒光PCR檢測儀內，記錄反應管擺放順序。選定5-羧基熒光素(FAM)作為報告基團，小溝結合物(MGB)為淬滅基團，反應參數(shù)設置如下:預變性95℃/3 min;95℃/15 s，52℃/10 s，60℃/35 s，45個循環(huán);在每次循環(huán)的60℃退火延伸時收集熒光。試驗結束后，根據(jù)收集的Ct值和熒光曲線判定結果。

6、結果判定

6.1 結果分析條件設定

實時熒光PCR檢測閾值設定原則:閾值線超過陰性對照擴增曲線的高點，且相交于陽性對照擴增曲線進入指數(shù)增長期的拐點，或根據(jù)儀器噪聲情況進行調整。每個樣品反應管內的熒光信號到達設定的域值時所經(jīng)歷的循環(huán)數(shù)即為Ct值。

6.2 結果描述及判定

當陽性對照Ct值≤28.0且出現(xiàn)典型擴增曲線，陰性對照無Ct值無擴增曲線時，實驗成立，實例參考附錄E。當被檢樣品出現(xiàn)典型的擴增曲線且Ct值≤38.0時，判為非洲豬瘟病毒核酸陽性;被檢樣品無Ct值，判為非洲豬瘟病毒核酸陰性;對于Ct值＞38.0的樣品且出現(xiàn)典型的擴增曲線，應重檢，重檢仍出現(xiàn)上述結果的判為陽性，否則判為陰性。